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一、前言
面部創傷（例如嚴重燒傷）或腫瘤切除術后耳鼻的重建可能具有挑戰性，特別是當軟骨框架受損時。然后，自體軟骨移植物通常與皮瓣聯合使用，例如鼻子的前額皮瓣或耳朵的脾氣膜筋膜瓣。然而，軟骨移植物的供體部位可能有限，并且總是存在一定量的供體部位發病率。1特別是，軟骨結構（如耳朵或鼻翼）的重建仍然是一個挑戰，因為它們復雜的三維形狀和對軟骨特征的高要求。2軟骨結構的彈性特性不僅與臨床結果相關，而且與更基礎的研究有關。
從臨床醫生的角度來看，人們傾向于關注移植組織的大規模力學。為了確定這一點，通常執行粗機械測試。例如，由Britt等人測量耳軟骨和組織工程軟骨的拉伸性能。3通過將增量拉伸載荷施加到啞鈴形的軟骨切口上。羅伊等人提出了另一種方法4誰比較了安裝在機械光譜儀中的3點彎曲裝置中的天然，工程耳骨和肋軟骨。壓縮載荷實驗通常由受限壓縮或壓痕組成。5，6拉伸或壓縮測量都有其優點和局限性。7然而，它們都有一個關鍵的局限性，即上述方法僅提供總解剖學尺度上的信息。目前，許多研究小組正在探索不同面部組織的再生醫學和組織工程的可能性。例如，組織工程耳軟骨可能是克服組織移植問題的一種選擇，例如供體部位的發病率。8從手術的角度來看，上述機械測試很重要，因為我們需要足夠強度的材料，以便在覆蓋肌肉和皮膚時保持形狀。然而，為了設計用于（軟骨）組織再生的適當支架，關于細胞外基質（ECM）水平的更詳細的機械信息至關重要。
組織工程的關鍵是為再生細胞保持其表型并形成新組織創造適當的環境。ECM是組織形式和功能的基礎。9耳軟骨ECM由膠原束，彈性蛋白纖維和糖胺聚糖的復雜混合物組成，每種都對組織的機械性能具有特定的影響。越來越多的證據表明，細胞非常容易受到其環境的機械特性的影響。10，11因此，支架的剛度對細胞行為和命運有重要影響。12–14從而在結構作為一個整體的機械特性上。為了形成正確的組織，支架必須與受損組織的原始硬度緊密匹配。因此，關于微尺度ECM生物力學的特定空間信息對于臨床成功至關重要;隨著時間的推移，我們需要能夠在細胞（微觀）水平上監測組織工程結構的機械性能。再生軟骨將隨著新的ECM組件和結構的發展而發生機械變化，支架退化并被替換。因此，在原子力顯微鏡（AFM）和大機械測試之間，在微觀尺度上對組織工程和移植結構的質量評估對于再生醫學的未來臨床實施至關重要。為了解決這個問題，我們測試了一種商用壓痕器件（Piuma Nanoindenter;Optics11，荷蘭阿姆斯特丹）能夠在適當的微尺度上進行測量。該系統基于套圈頂懸臂探頭12其在生命科學研究領域的應用已經在不同領域得到證明。13，14在這里，我們擴展了這一系列研究，以評估其使用反向組織工程模型監測耳軟骨再生隨時間變化的適用性。
軟骨對機械力的響應受2種機制的影響：流體動力學和ECM結構本身的變化。5糖胺聚糖通過吸引水分和使滲透壓積聚而形成ECM的重要組成部分。15彈性蛋白纖維的分布和機械功能是耳軟骨所有的。16它們對耳朵特定機械性能的貢獻使得在植入工程軟骨時，它們已經充分形成至關重要。相反，去除這些成分中的任何一個都會定性地影響軟骨。我們設計了一個耳軟骨組織模型，以反向方式模擬支架隨時間推移的發展。通過對這些組分中的任何一種進行特定的酶降解，我們創建了一個客觀的研究模型，以測試壓頭是否能夠在非破壞性物質中以適當的尺度準確測量ECM的各種結構組分之間的差異。隨著人們的廣泛關注和最近的進展，例如用于組織再生的3維生物打印機，從頭到尾監測發育組織的機械質量的能力對于在臨床上實施這些新型組織工程方法至關重要。
二、方法
（1）樣品制備
耳軟骨是在附近屠宰場從2至3歲的荷蘭奶山羊單側獲得的。耳朵（n = 9）被運送到冰上的實驗室，在那里±2厘米2從每個耳朵的基部取出大小大小的軟骨樣本。將樣品進一步橫向分成三個5mm高的部分，并用一層薄薄的氰基丙烯酸酯（超級）膠水固定在玻璃顯微鏡載玻片上。新鮮測量每個耳樣品的橫向平面，然后將相同的樣品在37°C的磷酸鹽緩沖鹽水中孵育，以便在24和48小時測量。其他2個樣品以類似的孵育方式進行，但分別加入1%的透明質酸酶或彈性蛋白酶溶液（均來自密蘇里州圣路易斯的Sigma Aldrich）以除去糖胺聚糖或彈性蛋白。
（2）縮進設置
使用商用納米壓痕儀（Piuma;光學11）。該儀器能夠通過壓痕局部測定樣品在空氣和液體環境中的機械性能。它采用套圈頂懸臂探頭8，22施加負載，同時使用基于光纖的讀數測量壓痕深度。由此產生的應力-應變曲線（圖.（圖1A）1A）使用Oliver和Pharr描述的模型進行分析17，23用于球形壓頭，以確定有效的楊氏模量 （E*）。使用合適的探頭進行設置，能夠施加0.1至7.5 μN的力。在每個系列實驗之前，通過縮進剛性表面并將懸臂彎曲等同于探頭位移來執行懸臂彎曲校準。在許多方面，這種設置可與AFM相媲美。然而，與大多數通常在亞細胞（納米）范圍內起作用的AFM相反，這種設置也能夠在細胞和組織范圍內發揮作用。
A、軟骨測量的壓痕曲線。切線（紅色）表示用于確定有效楊氏模量的卸載曲線的斜率。B，壓頭的圖形細節：球形成壓頭（? = 78μm）。
（3）壓痕探頭
使用直徑為78μm，剛度為80 N /m的球形壓頭來接觸面積，并將壓痕過程中的組織損傷降至（圖.（圖1B）。1B）.為了進一步增加與的接觸面積，通過使用設置的全壓痕深度（20μm）使壓痕深度。
（4）縮進協議
壓痕協議經過精心優化，以最大限度地減少影響測量的粘彈性效應。使用2秒加載周期，2秒保持期和4秒卸載周期，可以精確確定曲線角系數。
（5）壓痕實驗
在實驗過程中將樣品浸沒在磷酸鹽緩沖鹽水中，以防止脫水并最大限度地減少壓頭和組織表面之間的粘合力。在準備實驗（未顯示數據）中，沒有發現膠水對負載的不利影響。每個樣品都沿著軟骨的中心線縮進，以避免邊緣效應。為了平均手術切口和組織不均勻性可能的表面粗糙度效應，將每個樣品縮進在相距300μm的9個位置以獲得平均數據。
（6）組織學
將三個樣品固定在4%福爾馬林中，并嵌入石蠟中，根據標準方案進行切片。載玻片用Alcian藍色或Lawson染色分別描繪糖胺聚糖或彈性蛋白纖維，并拍攝顯微圖像（徠卡DM4000B / DC500;韋茨拉爾， 德國;放大倍率，200×）。
（7）統計分析
在降解實驗之前，通過對3個不同耳軟骨樣品的單一位置進行10次連續測量的類內相關系數（雙向隨機效應）來確定壓痕的再現性。使用類間相關系數（ICC）計算降解實驗中單個樣品上單獨壓痕之間的變異性。基于這些結果，通過方差檢驗的單變量分析確定了有效楊氏模量的差異。所有分析均使用SPSS統計軟件版本22進行。P值小于0.05被認為是顯著的。
三、結果
這些實驗的一個重要方面是壓痕協議的定義，以確保粘彈性效應既不影響也不影響卸載曲線。粘彈性效應表現為壓痕過程中能量的時間依賴性耗散。18這在應力-應變曲線中通過加載曲線和卸載曲線之間的面積進行可視化。奧利弗和法爾描述的模型17利用卸載曲線的斜率來確定有效的楊氏模量（圖.（圖 1A）。1為了實現這一點，在加載后引入保持期，以使樣品有足夠的時間在卸載樣品之前使能量消散。除此之外，卸載速度保持足夠慢，以使樣品能夠重新調整到不斷減小的負載，因為延遲樣品響應的累積會對卸載曲線產生不利影響。準備實驗（數據未顯示）表明，2秒負載，2秒保持和4秒卸載周期足以防止粘彈性效應顯著影響卸載曲線（負載值線性下降，從而可以精確確定曲線角度系數;圖）。圖1A）。1A）.雖然樣品在壓痕深度方面在保持期后仍表現出松弛，但較長的保持期并不表明在*壓痕期間能量耗散的顯著變化。探針直徑的選擇基于組織學切片，顯示平均山羊耳狀軟骨細胞直徑約為10μm，而含有2或3個軟骨細胞的更橢圓形的腔隙最長測量在40μm左右（圖。（圖 2）。2).因此，78μm被認為足以測量平均ECM值，同時仍然足夠精細以提供詳細信息。文獻中的力學測試顯示，耳軟骨的楊氏模量范圍為0.8至8 MPa。16以此為參考，選擇了剛度為80 N / m的懸臂，以確保探頭的大部分行程將轉化為壓痕深度而不是懸臂彎曲，從而產生7至15μm之間的壓痕深度。
山羊耳朵軟骨橫截面的微觀明場濾波圖像（100×）。平均空隙大小約為40μm（紅色橢圓）。
通過在3個不同樣品上的單個點重復壓痕來確認壓痕系統的可重復性，ICC為0.99。組織學證實了糖胺聚糖和彈性蛋白從進行壓痕實驗的外圍區域的處理組織樣品中降解（圖。（圖3）3).
3 個隨機標本（山羊 1、4 和 7）的組織學圖像 （200×）在 48 小時處染色糖胺聚糖（阿爾西安藍染色，左部分）和彈性蛋白（勞森染色，右部分）。所有圖像均從橫向樣品側拍攝，其中進行壓痕（每張圖像的頂部），并且最大限度地暴露于酶。兩組對照樣品均顯示強糖胺聚糖或彈性蛋白染色。用透明質酸酶或彈性蛋白酶處理的樣品顯示出污漬強度降低，特別是在虛線框所描繪的橫向（縮進）區域。酶滲透和隨后的降解都綽綽有余，遠遠超過最大壓痕測量深度（>20μm）。
每個樣品的不同測量結果具有良好的再現性，ICC平均值為0.9（0.81-0.98）。發現耳軟骨有效楊氏模量的本地值為5.2 MPa（±0.7）。透明質酸酶治療24和48小時后，這些值分別降至2.2 MPa（±0.6）和2.0 MPa（±0.3）。特別是在彈性蛋白酶組中，個體差異差異很大，24小時時平均有效楊氏模量為4.2 MPa（±0.62），48小時后平均有效楊氏模量為3.0 MPa（±0.44）（圖。（圖 4）。4).對照組的加班時間也略有下降，可能是由于自溶過程，但48小時后所有治療組之間均觀察到穩定且顯著的差異（P <0.001）（圖5）5).
Young在24小時（左）和48小時（右）下每組不同樣品的模量。Co，控制;Ela，彈性蛋白酶處理組;Hya，透明質酸酶治療組。
24小時和48小時降解后樣品組的平均楊氏模量（**P <0.001）。對照組在24小時后顯示初始僵硬喪失，但在48小時時沒有進一步下降。彈性蛋白酶處理組（Ela）與透明質酸酶處理組（Hya）不同，在酶暴露24小時后沒有顯示出明顯的僵硬損失。在48小時時，與對照組相比，所有治療組的僵硬均顯著降低。
四、討論
當臨床醫生想到組織工程時，他們往往傾向于只關注總機械性能的最終結果，因為從臨床角度來看，這一方面對手術成功至關重要。然而，現在人們越來越認識到，許多組織工程植入物由于細胞的異常行為導致鈣化或變形和再吸收而長期失敗。19優化細胞將遇到的生物力學環境可能是指導細胞分化和基質生產質量的關鍵。測量Young組織和支架模量的細微差異的能力對于正確微調細胞生物力學微環境至關重要。在這項研究中，我們研究了一種能夠在細胞水平上測量組織硬度的新工具，該工具不僅可以對發育組織和構建體的最終特征進行無損評估，還可以對發育中的組織和構建體的起始條件和過程質量進行無損評估，從而促進新型，有效的組織工程方法的開發。
我們選擇了“反向組織工程模型"，使用山羊耳朵軟骨作為新鮮材料的一致來源，以證明這項新技術在測量各種組合物中的組織彈性的適用性。為了探索我們的設置的適用性和靈敏度，以檢測組織（再）生成過程中組織（再）生成過程中ECM質量和組成的細微差異，以組織剛度為結果參數，我們用不同的降解酶處理成熟的彈性軟骨。彈性蛋白或糖胺聚糖的去除導致彈性的顯著普遍降低。然而，彈性蛋白酶消化組的巨大差異令人驚訝。史密斯等人20已經注意到，它們在椎間盤環纖維中酶促降解彈性纖維的廣泛方案不是絕對的。特別是在彈性蛋白酶組中，他們報告了高變異性。他們進一步提出，彈性纖維的降解會導致膠原結構的分離和變形。這可以解釋為什么我們在彈性蛋白酶組中發現了如此大的品種;換句話說，這可能是由于彈性蛋白濃度的變化和隨后動物之間的降解以及剩余膠原基質的重排。后者也可以解釋一些樣品的彈性最初略有增加。在一項關于彈性蛋白酶對豬肉色動脈壁的影響的研究中也觀察到了這種效應。21彈性蛋白酶降解與動脈壁腫大有關，但與硬化或軟化無關。彈性蛋白纖維改變后ECM的結構變化也被提出是耳朵隨著年齡增長而增大的原因。22
總之，確定（亞）細胞水平上的機械性質對于深入了解細胞外力學的優化至關重要。我們使用的光機械傳感器系統提供了一種快速可靠的方法來測量該水平上的軟骨ECM變化。目前，我們正在探索將壓痕系統與光學相干斷層掃描相結合的可能性，這將允許在縮進時同時可視化組織結構。因此，可以以無創方式辨別不同組織層的硬度。將來，這可能為我們提供一種重要的臨床工具，以確定面部重建中移植或再生組織的質量。
